1 Ćwiczenia informacyjne. Sposoby pobierania krwi z żyły ogonowej, płatka ucha, serca płazów i palca. Środki zapobiegające krzepnięciu krwi.
2 Sporządzanie rozmazu krwi człowieka i żaby oraz ich utrwalanie. Ogólna analiza morfologiczna krwi w rozmazie nie barwionym i barwionym metodą Pappenheima.
3 Obliczanie stosunków procentowych białych ciałek krwi. Wyliczanie wzoru Arnetha.
4 Metody liczenia elementów upostaciowionych krwi. Liczenie erytrocytów w 1 mm3 krwi.
5 Obliczanie ilości białych ciałek krwi w 1 mm3 krwi.
6 Barwienie płytek krwi. Oznaczanie liczby płytek krwi w rozmazie barwionym oraz w komorze Burkera.
7 Barwienie retikulocytów. Liczenie ilości retikulocytów i eozynofilii w krwi obwodowej. Wykrywanie erytrocytów nakrapianych zasadochłonnie.
8 Hemoliza krwinek. Zachowanie się erytrocytów w rostworach o różnym stężeniu.
9 Oznaczanie maksimum i minimum rezystencji. Krzepnięcie krwi. Oznaczanie czasu krwawienia i krzepnięcia krwi. Wpływ jonów wapnia i heparyny na czas krzepnięcia.
10 Oznaczanie ilości hemoglobiny metodą Sahliego i spektrofotometryczną. Otrzymywanie chlorheminy i kryształków hemoglobiny. Obliczanie indeksu barwnego krwi.
11 Oznaczanie grup krwi i czynnika Rh.
12 Osocze krwi, odbiałczanie surowicy, składniki azotowe niebiałkowe, składniki organiczne bezazotowe. Wykrywanie i oznaczanie ilości glukozy. Wykrywanie ilości cholesterolu.
13 Oznaczanie ilości sodu, potasu i wapnia w surowicy krwi szczura metodą fotometrii płomieniowej.
14 Test sprawdzający
15 Kolokwium poprawkowe i zaliczanie semestru.

SERCE I UKŁD KRĄŻENIA

1 Obserwacja naczyń włosowatych u żaby. Preparacja serca żaby. Wpływ jonów wapnia i potasu na czynność serca żaby. Wpływ temperatury na pracę serca.
2 Centra automatyzmu serca. Przewiązki Stanniusa. Obserwacja i zapis pracy serca żaby in situ i izolowanego. Wpływ acetylocholiny i adrenaliny na zapis pracy serca.
3 Pomiar ciśnienia krwi i tętna u człowieka. Osłuchiwanie tonów serca.

UKŁAD POKARMOWY

4 Otrzymywanie śliny. Enzymatyczny rozkład skrobi. Wykrywanie cukrów i białek zawartych w ślinie. Wykrywanie składników nieorganicznych w ślinie.
5 Enzymatyczny rozkład białka pod wpływem działania pepsyny. Trawienie białka trypsyną. Działanie amylazy trzustkowej. Trawienie tłuszczów przez lipazę trzustkową.
6 Oznaczanie białka całkowitego i glutationu zredukowanego w wątrobie i nerkach. Oznaczanie zawartości glikogenu w wątrobie.

UKŁAD WYDALNICZY

7 Biochemiczne badanie moczu. Wykrywanie cukru, białek, ciał ketonowych, barwników żółciowych i urobilinogenu w moczu.
8 Wykrywanie składników nieorganicznych w moczu. Mikroskopowe badanie osadu moczu.

UKŁD MIĘŚNIOWY

9 Preparat nerwowo-mięśniowy żaby. Wpływ czynników fizycznych i chemicznych na zachowanie się łapki reoskopowej.
10 Działanie acetylocholiny na izolowany mięsień szkieletowy. Oznaczanie aktywności acetylocholinoesterazy w mięśniach szkieletowych.

UKŁAD HORMONALNY

11 Analiza cyklu estralnego u myszy metodą cytologii eksfoliatywnej. Fizjologia rozrodu. laktacja.

UKŁAD NERWOWY

12 Odruchy żaby zdekapitowanej. Analiza anatomii rdzenia kręgowego. Odruchy obronne u żaby i szczura. Oznaczanie czasu odruchów metodą Türka. Odruchowa kontrola napięcia mięśni szkieletowych wg. Brondgeesta.
13 Ośrodkowy układ nerwowy. Budowa anatomiczna i fizjologia mózgowia żaby wodnej, myszy i człowieka. Analiza histologiczna wybranych struktur mózgowia.
14 Test sprawdzający. Kolokwium poprawkowe. Zaliczenie końcowe ćwiczeń.